ОСОБЕННОСТИ РАЗВИТИЯ И БИОЛОГИЧЕСКИЕ ПРИЕМЫ КОНТРОЛЯ ГЕЛЬМИНТОСПОРИОЗНЫХ ПЯТНИСТОСТЕЙ ЯРОВОГО ЯЧМЕНЯ
Рубрики: АГРОНОМИЯ
Аннотация и ключевые слова
Аннотация:
Проведена оценка видового состава гельминтоспориозных пятнистостей ярового двурядного ячменя. Установлено, что преобладающим микозом данного типа в период 2022-2025 гг. на культуре была темно-бурая пятнистость (патоген – Bipolaris sorokiniana (Sacc.) Shoemaker). В полевых условиях (серая лесная среднесуглинистая почва) в 2022-2024 гг. проведена оценка влияния применения биопрепаратов на основе эндофитных бактерий на развитие гельминтоспориозных пятнистостей листьев ярового ячменя сорта Раушан. Применение для обработки семян и опрыскивания посевов биопрепарата на основе эндофитной бактерии (Bacillus mojavensis PS-17) оказывает значительное положительное влияние на снижение поражения растений ярового ячменя всеми гельминтоспориозными пятнистостями (биологическая эффективность против темно-бурой пятнистости составила – 21,7%; сетчатой пятнистости – 35,1%). При этом отмечался рост урожайности на 0,87 т/га или на 17% к варианту без обработок. В 2025 году, в условиях благоприятных для развития болезней типа пятнистостей, на яровом ячмене сорта Память Чепелева проводились испытания эффективности смесевых биопрепаратов (эндофитные бактерии в смеси с янтарной кислотой) при однократном и двукратном применении. Было установлено, что использование таких препаратов, особенно при двукратной обработке, способствует снижению поражения листовой поверхности темно-бурой пятнистостью и сетчатой пятнистостью. Биологическая эффективность контроля составила для первого микоза – 20,8-21,9%, для второго – 18,3-19,4%. Применение препарата на основе янтарной кислоты и Bacillus spp. KS-63 AU привело к увеличению урожайности ярового ячменя на 0,55 т/га (на 19 %) к контролю. В результате исследований показана перспективность использования биологических препаратов на основе эндофитных бактерий для применения в качестве биологических приемов защиты, в том числе в органическом производстве ярового ячменя.

Ключевые слова:
болезни растений, микозы, пятнистости листьев, гельминтоспориозы, биологическая защита, биопрепараты, яровой ячмень
Текст
Текст (PDF): Читать Скачать

Введение. Яровой ячмень остается важнейшей продовольственной и кормовой зерновой культурой в Российской Федерации и в мире [1, 2]. Среди факторов, ограничивающих рост урожайности и значительно ухудшающих качественные характеристики зерна ячменя, особое место занимают микозы, ущерб от которых может достигать значительного уровня [3, 4]. К числу наиболее распространенных и вредоносных болезней грибной этиологии относятся пятнистости листьев, вызываемые грибами, исторически относящимися к группе «гельминтоспориозов», т.к. первоначально фитопатогены данной группы относились к роду Helminthosporium [5, 6, 7]. К числу таких болезней относятся – темно-бурая пятнистость (Bipolaris sorokiniana (Sacc.) Shoemaker (телеоморфа Cochliobolus sativus (S. Ito & Kurib.)), сетчатая пятнистость (Drechslera teres (Sacc.) Shoem (телеоморфа Pyrenophora teres Drechsler)), полосатая пятнистость (Drechslera graminea (Rabenh.) Shoemaker (телеоморфа Pyrenophora graminea S. Ito et Kurib.))  [8, 9, 10]. Данные заболевания распространены в Республике Татарстан и относятся к числу важнейших объектов контроля в зональных системах защиты культуры [11].

Для контроля гельминтоспориозных пятнистостей ярового ячменя применяются различные химические фунгициды, прежде всего, относящиеся к группе триазолов [12, 13]. Однако, с учетом роста рисков развития резистентности к системным фунгицидам у фитопатогенов и необходимостью экологизации производства зерна, все большее значение приобретает разработка биологических методов контроля болезней, в том числе и на яровом ячмене. Перспективность данного направления подтверждается в целом ряде исследований [14, 15]. В качестве биологических агентов биофунгицидов, применяемых на яровом ячмене, высокую активность показывают препараты на основе бактерий рода Bacillus [16, 17, 18]. К числу таких микроорганизмов относятся и  эндофитные бактерии, выделенные из растений, обладающие высокой активностью в отношении контроля различных фитопатогенов  [19, 20]. Кроме того, имеются сведения о высокой активности ряда органических кислот, в частности янтарной кислоты в повышении устойчивости растений к болезням и абиотическим стрессам [21, 22].

Целью работы было изучение особенностей распространения гельминтоспориозных пятнистостей и оценка эффективности биологических методов их контроля на яровом двурядном ячмене зернофуражного назначения в условиях Предкамской зоны Республики Татарстан.

Условия, материалы и методы. Учеты развития листовых болезней  и два   полевых опыта проводились в период 2022-2025 гг. на опытных участках (Агробиотехнопарк Казанского ГАУ, опытные поля кафедры Общего земледелия, защиты растений и селекции) вблизи населенного пункта Нармонка, расположенного в  Предкамье Республики Татарстан.  Учет поражения растений в фазы   выхода в трубку, колошения и молочной спелость, при оценке роли различных гельминтоспориозных пятнистостей в многолетней динамике проводился на восприимчивом сорте Рушан на делянках, где не применялись фунгициды.

         Опыт 1. Оценка  эффективности применения биопрепарата на основе эндофитной бактерии Bacillus mojavensis PS-17 (2022-2024 гг.)

         Объект исследований – среднеспелый сорт ярового двурядного пленчатого ячменя Раушан (отличается восприимчивостью к гельминтоспориозной пятнистости).

         Схема опыта: 1. Контроль (без обработки биопрепаратом). 2. Обработка семян, 1 л/т; 3. Обработка растений (опрыскивание в фазу выхода в трубку и в фазу колошения с нормой расхода рабочей жидкости 200 л/га), 1 л/га. 4. Сочетание обработки (обработка семян + обработка растений).

 Общая площадь делянки – 25 м2, учетная – 20 м2. Повторность в опыте – трехкратная. Предшественник в опыте – чистый пар.

Штамм  Bacillus mojavensis PS-17 входит в состав  биопрепарата Системика М (ООО “Органик Парк”).

Опыт 2. Оценка  эффективности применения биопрепарата на основе эндофитных бактерий  и янтарной кислоты (2025 г).

         Объект исследований – среднеспелый сорт ярового двурядного пленчатого ячменя Память Чепелева (умеренно устойчив к полосатой пятнистости).

         Схема опыта: 1. Контроль (без обработки биопрепаратом). 2. Однократная обработка препаратом (Bacillus amyloliquefaciens  KS-25 AU + янтарная кислота).

в фазу выхода в трубку. 3. Однократная обработка препаратом (Bacillus spp.  KS-63 AU + янтарная кислота) в фазу выхода в трубку. 4. Двукратная  обработка препаратом (Bacillus amyloliquefaciens  KS-25 AU + янтарная кислота) в фазу выхода в трубку и в фазу колошения. 5. Двукратная  обработка препаратом (Bacillus spp.  KS-63 AU + янтарная кислота) в фазу выхода в трубку и в фазу колошения.

         Штамм Bacillus amyloliquefaciens  KS-25 AU выделен из семян яровой пшеницы и  депонирован в Сетевой биоресурсной коллекция в области генетических технологий для сельского хозяйства (RCAM) при Федеральном государственном бюджетным научном учреждении «Всероссийский научно-исследовательский институт сельскохозяйственной  микробиологии» (ФГБНУ ВНИИСХ) и включен в коллекцию под номером RCAM06734.

         Штамм  Bacillus velezensis KS-63 AU выделен из семян сои и находится на этапе депонирования.

         Соотношение в биопрепарате культуральной жидкости биоагентов и раствора органической кислоты – 1 : 1. Во всех опытных вариантах использовалась норма расхода препарата 1 л/га.

         Расход рабочей жидкости – 200 л/га.

 Общая площадь делянки – 25 м2, учетная – 20 м2. Повторность в опыте – трехкратная. Предшественник в опыте – яровая пшеница.

В обоих опытах норма высева всхожих семян составила 5,5 млн. шт./га. Агротехнология возделывания соответствала зональным рекомендациям. Перед посевом вносилась нитроаммофоска (150 кг/га в физическом весе).  Почва опытных участков (серая лесная среднесуглинистая) отличается высоким содержанием гумуса (3,2-3,9%), обменного калия (159-161 мг/кг), подвижного фосфора (275-281 мг/кг) при реакции почвенного раствора близкой к нейтральной (почва высокоокультуренная).

Вегетация 2022 и 2023 гг. отличались засушливыми условиями (ГТК =0,33-0,66), в 2024 году условия были относительно благоприятными (ГТК= 0,94), а в 2025 году отмечались периоды с большим количеством осадков (ГТК=1,79), что отразилось на развитии болезней. Гидротермический коэффициент (ГТК) рассчитывали по Селянинову за период май-август по данным метопоста Казанского ГАУ.

Учет болезней проводился в период вегетации (в фазу выхода в трубку, колошения, молочной спелости) в соответствии с рекомендациями для ячменя Для учета темно-бурой и полосатой пятнистой использовались четырехбалльная шкала, для учета  сетчатой пятнистости  – визуальная шкала  А.Е. Чумакова, Т.И. Захаровой [23].  На основании полученных данных, рассчитывался показатель развития болезни (в фазы   выхода в трубку, колошения и молочной спелость), а затем определялся показатель в среднем за учеты.  Расчет биологической эффективности контроля болезней проводилась согласно «Методическим указаниям по регистрационным испытаниям фунгицидов в сельском хозяйстве» по стандартной формуле Аббота.

Статистическая обработка данных проводилась с использованием пакета программ  Statistica 6.0 и Excel. Дисперсионный анализ проводился по Б.А. Доспехову при уровне значимости Р =0,05.    

Результаты и обсуждение.

Данные по итогам учетов развития листовых гельминтоспориозных пятнистостей представлены в таблице 1.

Таблица 1 – Развитие листовых гельминтоспориозных пятнистостей на яровом ячмене сорта Раушан (в среднем за вегетацию), %, 2022-2025 гг.

Год исследований (ГТК за вегетацию)

Заболевание

темно-бурая пятнистость

сетчатая пятнистость

полосатая пятнистость

2022 (ГТК=0,33)

24,0

22,7

0

2023 (ГТК = 0,66)

17,7

17,3

0

2024 (ГТК=0,94)

24,7

20,7

0

2025  (ГТК= 1,79)

26,9

21,0

4,9

В среднем за 2022-2025 гг.

23,3

20,4

1,2

Коэффициент вариации, %

16,9

11,1

 

Примечание: с учетом отсутствия в период 2022-2024 гг. на посевах полосатой пятнистости, коэффициент вариации для данного заболевания не рассчитывался.

         Во все годы исследований преобладающим микозом на листьях ярового ячменя была темно-бурая пятнистость (среднее за годы исследований развитие болезни 23,3%), несколько в меньшей степени растения поражались сетчатой пятнистостью, а полосатая пятнистость регистрировалась только в 2025 году, отличающегося большим количеством осадков. В тоже время, анализ коэффициента вариации показателя показал, что значения развития болезней для сетчатой пятнистости были более стабильными по годам (коэффициент вариации 11,1%), чем для  темно-бурой пятнистости (коэффициент вариации – 16,9%). Максимальные значения для всех заболеваний складывались в условиях более увлажненного 2025 года.

         С целью оценки влияния применения биопрепарата на основе эндофитной бактерии Bacillus mojavensis PS-17 на болезни проводился фитопатологический мониторинг посевов и рассчитывался показатель биологической эффективности (по формуле Аббота) их контроля (табл. 2).

Таблица 2 – Развитие листовых гельминтоспориозных пятнистостей (числитель) и биологическая эффективность контроля (знаменатель) на яровом ячмене сорта Раушан при использовании биопрепарата на основе Bacillus mojavensis PS-17 (в среднем за вегетацию), %, 2022-2024 гг.

Вариант

Заболевание

темно-бурая пятнистость

сетчатая пятнистость

полосатая пятнистость

Контроль

22,1

20,2

0

Обработка семян

19,2/13,1

15,0/25,7

0

Обработка растений

19,4/12,2

14,6/27,7

0

Обработка семян +обработка растений

17,3/21,7

13,1/35,1

0

 НСР05

1,1

0,8

 

 

         Полученные результаты подтвердили, что биопрепарат на основе эндофитной бактерии Bacillus mojavensis PS-17, оказывает положительное влияние на снижение поражения растений гельминтоспориозными пятнистостями. В большей степени данный эффект проявился в отношении сетчатой пяятнистости, в меньшей  – для темно-бурой пятнистости.

         Максимальные значения биологической эффективности (21,7% для темно-бурой пятнистости и 35,1% для сетчатой пятнистости) отмечали при комбинированной обработке – обработка семян + обработка растений.

         В результате применения биопрепарата отмечался и рост урожайности ярового ячменя (табл. 3).

Таблица 3 – Урожайность ярового ячменя сорта Раушан при использовании биопрепарата на основе Bacillus mojavensis PS-17, т/га, 2022-2024 гг.

Вариант

2022 г

2023 г

2024 г

Средняя за 3 года

Прибавка

т/га

%

Контроль

5,42

4,72

5,22

5,12

 

 

Обработка семян

5,94

5,15

5,27

5,45

0,33

6,4

Обработка растений

6,40

5,52

5,32

5,75

0,63

12,3

Обработка семян +обработка растений

6,60

5,77

5,60

5,99

0,87

17,0

 НСР05

0,21

0,27

0,16

 

 

 

 

Эффективность лишь обработки семян и только опрыскивания биопрепаратом различалась по годам, если в более засушливых условиях (2022 и 2023 гг.)  они обеспечили достоверный рост урожайности в сравнении с контролем, то в более благоприятном 2024 году такого эффекта не отмечалось. В то же время, сочетание обработки семян и обработки растений, во все годы исследований приводила к росту величины урожая, причем в среднем за годы исследований он достиг уровня 17,0% к контролю.

С целью расширения спектра активности, проведены исследования по оценке эффективности биопрепаратов на основе эндофитных бактерий и янтарной кислоты (табл. 4).

Эффективность   биопрепаратов сильно зависела от кратности обработки, если при однократном применении, практически   не оказали существенного влияния на развитие темно-бурой пятнистости, то при двукратном опрыскивании посевов отмечается снижение развития обоих микозов, причем уровень биологической эффективности против темно-бурой пятнистости (20,8-21,9%), был выше, чем для сетчатой пятнистости (18,3-19,4%). Низкая эффективность однократной обработки биопрепаратами может быть связана с очень благоприятными условиями для развития листовых гельминтоспориозов в условиях 2025 года. Значительных различий по эффективности контроля между препаратами с разными штаммами эндофитных бактерий не отмечалось.

 

Таблица 4 – Развитие листовых гельминтоспориозных пятнистостей   и биологическая эффективность контроля   на яровом ячмене сорта Память Чепелева  при использовании биопрепарата, 2025 г.

Вариант

Развитие болезни, %

Биологическая эффективность, %

темно-бурая пятнистость

сетчатая пятнистость

темно-бурая пятнистость

сетчатая пятнистость

Контроль

16,0

15,3

 

 

Однократная обработка

Bacillus amyloliquefaciens  KS-25 AU + янтарная кислота

16,0

13,0

0

15,0

Bacillus spp.  KS-63 AU + янтарная кислота

16,3

13,3

0

12,9

Двукратная обработка

Bacillus amyloliquefaciens  KS-25 AU + янтарная кислота

12,7

12,3

20,8

19,4

Bacillus spp.  KS-63 AU + янтарная кислота

12,5

12,5

21,9

18,3

 НСР05

0,61

0,54

 

 

Применение биопрепаратов оказало влияние и на урожайность ярового ячменя (табл. 5).

Таблица 5 – Урожайность ярового ячменя сорта Память Чепелева при использовании биопрепарата, т/га,  2025 г.

Вариант

Урожайность, т/га

Прибавка урожая

т/га

%

Контроль

2,90

 

 

Однократная обработка

Bacillus amyloliquefaciens  KS-25 AU + янтарная кислота

3,16

0,26

9,0

Bacillus spp.  KS-63 AU + янтарная кислота

3,29

0,39

13,4

Двукратная обработка

Bacillus amyloliquefaciens  KS-25 AU + янтарная кислота

3,24

0,34

11,7

Bacillus spp.  KS-63 AU + янтарная кислота

3,45

0,55

19,0

 НСР05

0,12

 

 

 

Во всех вариантах с применением биопрепаратов отмечался достоверный рост урожайности (на 9,0-19,0 % к контролю). При оценке различных препаратов установлено, что препарат на основе штамма  Bacillus spp.  KS-63 AU как при однократном, так и при двукратном применении оказывает более выраженное положительное влияние на урожайность ярового ячменя, чем биопрепарат на основе Bacillus amyloliquefaciens  KS-25 AU. В целом по опыту, наибольшая урожайность (3,45 т/га или на 19% выше, чем в контроле) была при двукратной обработке составом Bacillus spp.  KS-63 AU + янтарная кислота.

Выводы.

  В течение последних четырех лет (2022-2025 гг.),  преобладающим микозом из группы гельминтоспориозных листовых пятнистостей, в условиях места проведения опытов, была темно-бурая пятнистость, но ее развитие сильно варьировало по годам, тогда как для сетчатой пятнистости вариация показателя развития болезни изменялась в меньшей степени.

Использование для обработки семян и последующего опрыскивания биопрепаратом на основе Bacillus mojavensis PS-17 оказывает положительное влияние на формирование урожая ярового ячменя и снижает развитие листовых болезней.

Показана перспективность использования биопрепаратов на основе янтарной кислоты и эндофитных бактерий (особенно штамма Bacillus spp.  KS-63 AU) при двукратной обработке на яровом ячмене даже в условиях благоприятных для развития листовых микозов.

Список литературы

1. Кумратова А.М., Алещенко В.В. Продуктивность зернового производства в России: тенденции и перспективы// Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2021. Т. 16. № 3(63). С. 142-146. https://doi.org/10.12737/2073-0462-2021-142-146.

2. Soare E., Bold N., Stoicea P., David L., Dobre C.-A., A.-R. Firățoiu, Survey on the worldwide barley production and trade //Bulg. J. Agric. Sci., 2023. Vol. 29 (1), Р.119–124.

3. Выявление источников устойчивости ярового ячменя к листовым болезням и каменной головне/ Н.В. Шишкин, Т.Г. Дерова, Е.С. Дорошенко и др.// Зерновое хозяйство России. 2020. № 5(71). С. 86-90. https://doi.org/10.31367/2079-8725-2020-71-5-86-90.

4. Wiewióra B, Żurek G. The infection of barley at different growth stages by bipolaris sorokiniana and its effect on plant yield and sowing value //Agronomy. 2024; Vol. 14(6):1322. https://doi.org/10.3390/agronomy14061322

5. Backes A, Guerriero G, Ait Barka E, Jacquard C. Pyrenophora teres: taxonomy, morphology, interaction with barley, and mode of control //Front Plant Sci. 2021 Apr 6;12:614951. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.614951.

6. Левакова О.В., Ерошенко Л.М. Устойчивые к гельминтоспориозным пятнистостям высокоурожайные сорта и линии ярового ячменя //Вестник российской сельскохозяйственной науки. 2020. № 2. С. 33-35. https://doi.org/10.30850/vrsn/2020/2/33-35.

7. Шешегова Т.К., Щенникова И.Н. Источники устойчивости ячменя к гельминтоспориозным болезням и их использование в ФАНЦ Северо-Востока// Вестник НГАУ (Новосибирский государственный аграрный университет). 2020. № 2(55). С. 76-83. https://doi.org/10.31677/2072-6724-2020-55-2-76-83.

8. Ассоциированные с ячменём микромицеты и их значимость как возбудителей болезней в России / Ф. Б. Ганнибал, Е. В. Полуэктова, Я. В. Лукьянец и др. // Вестник защиты растений. 2023. Т. 106. № 4. С. 172-186. https://doi.org/https://doi.org/10.31993/2308-6459-2023-106-4-16116.

9. Интегрированная защита ячменя ярового на Северо-Западе России / А. М. Шпанев, А. Б. Лаптиев, Н. Р. Гончаров, В. В. Воропаев //Защита и карантин растений. 2020. № 6. С. 30-36.

10. Çelik Oğuz A., Karakaya A. Genetic diversity of barley foliar fungal pathogens// Agronomy. 2021. 11. 434. https://doi.org/10.3390/agronomy11030434

11. Каримова Л. З. Особенности формирования урожая ярового ячменя и развития гельминтоспориозов на различных сортах ярового ячменя// Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2012. Т. 7. № 1(23). С. 129-132.

12. Биологическая эффективность средств защиты растений в посевах ярового ячменя сорта Емеля / А. В. Бобровский, Н. С. Козулина, А. В. Василенко и др.// Защита и карантин растений. 2023. № 7. С. 22-24. https://doi.org/10.47528/1026-8634_2023_7_22.

13. Горянин О.И., Пронович Л.В. Влияние элементов технологий на эффективность возделывания ярового ячменя в засушливых условиях Поволжья // Достижения науки и техники АПК. 2024. Т. 38. № 6. С. 11-15. https://doi.org/10.53859/02352451_2024_38_6_11.

14. Коробов В.А., Морозов Д.О., Букреев В.В. Эффективность различных систем защиты ярового ячменя от болезней// Защита и карантин растений. 2023. – № 5. С. 16-17. https://doi.org/https://doi.org/10.47528/1026-8634_2023_5_16.

15. Валидов Ш.З., Комиссаров Э.Н. Бактериальный консорциум на основе ризосферных бактерий ярового ячменя // Вестник Казанского государственного аграрного университета. 2024. Т. 19. № 4(76). С. 12-17. https://doi.org/https://doi.org/10.12737/2073-0462-2024-12-17.

16. Продуктивность яровых колосовых культур при применении биопрепаратов на основе - Bacillus subtilis в условиях Республики Татарстан / Ф. Ш. Шайхутдинов, И. М. Сержанов, Р. И. Гараев и др. // Агробиотехнологии и цифровое земледелие. 2022. № 1(1). С. 28-34. https://doi.org/10.12737/-2022-1-1-28-34.

17. Шпанев А.М., Денисюк Е.С. Эффективность микробиологических препаратов на основе Bacillus subtilis и Trichoderma harzianum в защите ярового ячменя от болезней на Северо-Западе России // Биотехнология. 2020. Т. 36. № 1. С. 61-72. https://doi.org/10.21519/0234-2758-2020-36-1-61-72.

18. Асатурова А.М., Жевнова Н.А., Сидоров Н.М., Кремнева О.Ю. Эффективность бактерий-антагонистов Bacillus и Pseudomonas в качестве агентов биоконтроля сетчатой пятнистости озимого ячменя в полевых условиях / // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки. 2024. Т. 54. № 10(311). С. 69-77. https://doi.org/10.26898/0370-8799-2024-10-7.

19. Влияние эндофитных бактерий Bacillus subtilis 26д и Bacillus velezensis m66 на устойчивость растений картофеля к возбудителю альтернариоза Alternaria solani / А. В. Сорокань, В. Ф. Габдрахманова, И. С. Марданшин, И. В. Максимов // Прикладная биохимия и микробиология. 2024. Т. 60. № 6. С. 623-631. https://doi.org/10.31857/S0555109924060064.

20. Weerasinghe V., Bakker M.G., Tucke J.R., Fernando W.G.D., Sura S., Badea A., Wijekoon C. Comparison of bacterial endophytes in barley grains infected and non-infected with fusarium head blight using metabarcoding //Plant Pathol. 2025. 74: 2241-2255. https://doi.org/10.1111/ppa.70015.

21. Nyzhnyk T., Kiedrzyński M., Kiedrzyńska E. Salicylic and succinic acids as inducers of phytoimmunity in winter wheat for the management of powdery mildew (Blumeria graminis (DC) Speer f. sp. tritici) //BMC Plant Biol. 2025. 376. https://doi.org/10.1186/s12870-025-06403-2

22. Влияние макроудобрений и стимуляторов роста на содержание хлорофилла в листьях яровой пшеницы / Н. А. Воронкова, В. А. Волкова, Н. А. Цыганова и др.// Плодородие. 2022. № 1(124). С. 17-21. https://doi.org/10.25680/S19948603.2022.124.05.

23. Афанасенко О.С. Устойчивость ячменя к гемибиотрофным патогенам // Идентифицированный генофонд растений и селекция. СПб.: ВИР, 2005. С. 592–609.

Войти или Создать
* Забыли пароль?