сотрудник
Россия
сотрудник
Россия
сотрудник
Россия
сотрудник
Россия
сотрудник
г. Москва и Московская область, Россия
ГРНТИ 76.03 Медико-биологические дисциплины
ГРНТИ 76.33 Гигиена и эпидемиология
ОКСО 14.04.02 Ядерные физика и технологии
ОКСО 31.06.2001 Клиническая медицина
ОКСО 31.08.08 Радиология
ОКСО 32.08.12 Эпидемиология
ББК 51 Социальная гигиена и организация здравоохранения. Гигиена. Эпидемиология
ББК 534 Общая диагностика
ТБК 5708 Гигиена и санитария. Эпидемиология. Медицинская экология
ТБК 5712 Медицинская биология. Гистология
ТБК 5734 Медицинская радиология и рентгенология
ТБК 6212 Радиоактивные элементы и изотопы. Радиохимия
Высвобождаемые из клеточных компартментов в результате процессов радиолиза под действием ионизирующего излучения высоко-мобильные группы белков, поврежденные ядерные и митохондриальные ДНК, внеклеточный АТФ и окисленные низкой плотности липопротеиды вызывают через паттерн распознающих рецепторов стресс-сигнальную активацию в облученных тканях с запуском каскада р53 и NF-κB провоспалительных путей, ведущих к экспрессии провоспалительных генов, стимулирующих синтез цитокинов семейства ИЛ-1. Чрезмерная активация провоспалительных путей под действием радиационного стресса ограничивается синтезом противовоспалительных цитокинов: ИЛ-4, ИЛ-10, ИЛ-11, ИЛ-13, а также антагонистами рецептора ИЛ-1 и фактором TGF-β. Г-КСФ и МГ-КСФ. Индуцированные действием провоспалительных цитокинов, они обладают противовоспалительными и антиапоптическими свойствами, способными понижать содержание провоспалительных цитокинов ИЛ-6 и ФНО-a. Глюкокортикоиды участвуют в регуляции первичного радиационного стресса, подавляя чрезмерную экспрессию генов провоспалительных цитокинов. По обратной связи при повышении уровня ИЛ-1 стимулируется секреция кортикостерона. В свою очередь, адренергическая стимуляция способна повышать экспрессию гена ИЛ-1β. Механизм радиационного апоптоза стволовых клеток реализуется через путь p53-Puma, который блокирует взаимодействие антиапоптических белков Bcl-2 с проапоптическими белками BAX и BAK. После высвобождения из митохондрий цитохрома С и апоптоз-индуцирующего фактора происходит активация эффекторных каспаз: через каспазу 9 каспазы 3, 6 и 7, и окончательное разрушение клетки. Путь Wnt является критически важным для регенерации тканей после лучевого поражения. Потенциал регенеративного ответа кроветворной ткани на лучевое поражение зависит от содержания катенина и способности Wnt-пути стимулировать восстановление костного мозга после облучения. Мезенхиальные стволовые клетки (МСК) костного мозга играют большую роль в пострадиационной регенерации кроветворной ткани. Основное их действие на регенерацию костного мозга осуществляется через рецепторы TLR2 and TLR4. Мобилизация кроветворных стволовых клеток связана с высвобождением из костного мозга протеаз, включая нейтрофильную эластазу и катепсин G, а также матрикс металлопротеиназы-9. Противолучевые свойства экзогенного ИЛ-1 не исчерпываются только повышенной продукции Г-КСФ и ГМ-КСФ. Большую роль в противолучевой защите играет реакция на воздействие ИЛ-1 в виде обратной связи с продукцией антиапоптических и противовоспалительных факторов. Первичный радиационный стресс ограничивает продолжительность радиомитигирующего эффекта ИЛ-1 1–2 ч при его применении после облучения.
первичный радиационный стресс, провоспалительные цитокины, интерлейкин-1β, антивоспалительные цитокины, гранулоцит-колонии стимулирующий фактор, пострадиационное восстановление кроветворения
1. Гребенюк А.Н., Легеза В.И. Противолучевые свойства интерлейкина-1. - СПб.: Фолиант. 2012. 216 с.
2. Wu S.G., Miyamoto T. Radioprotection of the intestinal crypts of mice by recombinant human interleukin-1 alpha // Radiat. Res. 1990. Vol. 123. № 1. P. 112-115.
3. Ильин Л.А., Рудный Н.М., Суворов Н.Н и соавт. Индралин - радиопротектор экстренного действия. Противолучевые свойства, фармакология, механизм действия, клиника. - М. 1994. 436 с.
4. Васин М.В., Ушаков И.Б., Ковтун В.Ю. и соавт. Характеристика противолучевых свойств радиопротектора Б-190 при его применении после облучения // Радиац. биол. Радиоэкол. 2008. Т. 48. № 6. С. 730-733.
5. Васин М.В., Ушаков И.Б., Ковтун В.Ю. и соавт. Противолучевые свойства радиопротектора экстренного действия индралина при его применении после облучения в условиях частичного экранирования живота крыс // Радиац. биол. Радиоэкол. 2008. Т. 48. № 2. С. 199-201.
6. Gluzman-Poltorak Z., Vainstein V., Basile L.A. Recombinant interleukin-12, but not granulocyte-colony stimulating factor, improves survival in lethally irradiated nonhuman primates in the absence of supportive care: evidence for the development of a frontline radiation medical countermeasure // Amer. J. Hematol. 2014. Vol. 89. № 9. P. 868-873.
7. Рождественский Л.М., Шлякова Т.Г., Щеголева Р.А. и соавт. Оценка противолучевой лечебной эффективности рекомбинантного тромбопоэтина на собаках по критериям показателей кроветворения и выживаемости // Радиац. биол. Радиоэкол. 2013. Т. 53. № 3. С. 280-289.
8. Гребенюк А.Н., Зацепин В.В., Аксенова Н.В. и соавт. Влияние последовательного применения препарата Б-190 и интерлейкина-1β на выживаемость и костномозговое кроветворение облученных мышей // Радиац. биол. Радиоэкол. 2010. Т. 50. № 4. С. 175-180.
9. Jang S.S., Park W.Y. The combined effects of amifostine and Interleukin 1 beta (IL-1beta) on radiation-induced gastrointestinal and hematopoietic injury // Cancer Res. Treat. 2003. Vol. 35. № 6. P. 528-532.
10. Лукашин Б.П., Софронов Г.А. Радиозащитное действие цистамина и гепарина в опытах на мышах с различной резистентностью // Бюлл. эксп. биол. и мед. 1996. Т. 121. № 5. С. 544-546.
11. Venereau E., Ceriotti C., Bianchi M.E. DAMPs from cell death to new life // Front. Immunol. 2015. Vol. 6. P. 422.
12. Васин М.В., Чернов Ю.Н. Влияние облучения на циркулирующие иммунные комплексы в крови крыс // Радиобиология. 1991. Т. 31. № 3. С. 365-367.
13. Schaue D., Kachikwu E.L., McBride W.H. Cytokines in radiobiological responses: a review // Radiat. Res. 2012. Vol. 178. № 6. P. 505-523.
14. Xiao M. The role of proinflammatory cytokine interleukin-18 in radiation injury // Health Phys. 2016. Vol. 111. № 2. P. 212-217.
15. Kim S.J., Choe H., Lee G.J. et al. Ionizing radiation induces innate immune responses in macrophages by generation of mitochondrial reactive oxygen species // Radiat. Res. 2017. Vol. 187. № 1. P. 32-41.
16. Linard C., Marquette C., Mathieu J. et al. Acute induction of inflammatory cytokine expression after gamma-irradiation in the rat: effect of an NF-kappaB inhibitor // Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 2004. Vol. 58. № 2. P. 427-434.
17. Cohen I., Rider P., Vornov E. et al. IL-1α is a DNA damage sensor linking genotoxic stress signaling to sterile inflammation and innate immunity // Sci. Rep. 2015. Vol. 5. P. 147-156.
18. Carta S., Lavieri R., Rubartelli A. Different members of the IL-1 family come out in different ways: DAMPs vs. cytokines? // Front. Immunol. 2013. Vol. 4. P. 123
19. Stoecklein V.M., Osuka A., Ishikawa S. et al. Radiation exposure induces inflammasome pathway activation in immune cells // J. Immunol. 2015. Vol. 194. P. № 3. P. 1178-1189.
20. Vince J.E., Silke J. The intersection of cell death and inflammasome activation // Cell Mol. Life Sci. 2016. Vol. 73. № 11-12. P. 2349-2367.
21. de Vasconcelos N.M., Van Opdenbosch N., Lamkanfi M. Inflammasomes as polyvalent cell death platforms // Cell Mol. Life Sci. 2016. Vol. 73. № 11-12. P. 2335-2347.
22. Sharma D., Kanneganti T.D. The cell biology of inflammasomes: Mechanisms of inflammasome activation and regulation // J. Cell Biol. 2016. Vol. 213. № 6. P. 617-629.
23. Moroni M., Lombardini E., Salber R. et al. Hematological changes as prognostic indicators of survival: similarities between Göttingen minipigs, humans, and other large animal models // PLoS ONE. 2011. Vol. 6. e25210.
24. Chwee J.Y., Khatoo M., Tan N.Y.J., Gasser S. Apoptotic cells release IL1 receptor antagonist in response to genotoxic stress // Cancer Immunol. Res. 2016. Vol. 4. № 4. P. 294-302.
25. Shonai T., Adachi M., Sakata K. et al. MEK/ERK pathway protects ionizing radiation-induced loss of mitochondrial membrane potential and cell death in lymphocytic leukemia cells // Cell Death Differ. 2002. Vol. 9. № 9. P. 963-971.
26. Di Maggio F.M., Minafra L., Forte G.I. et al. Portrait of inflammatory response to ionizing radiation treatment // J. Inflamm. (Lond). 2015. Vol. 12. P. 14.
27. Redondo-Castro E., Cunningham C., Miller J. et al. Interleukin-1 primes human mesenchymal stem cells towards an anti-inflammatory and pro-trophic phenotype in vitro // Stem Cell Res. Ther. 2017. Vol. 8. № 1. P. 79. DOI:https://doi.org/10.1186/s13287-017-0531-4.
28. Kim J.S., Yang M., Lee C.G. et al. In vitro and in vivo protective effects of granulocyte colony-stimulating factor against radiation-induced intestinal injury // Arch. Pharm. Res. 2013. Vol. 36. № 10. P. 1252-1261. DOI:https://doi.org/10.1007/s12272-013-0164-9.
29. Singh V.K., Fatanmi O.O., Singh P.K., Whitnall M.H. Role of radiation-induced granulocyte colony-stimulating factor in recovery from whole body gamma-irradiation // Cytokine. 2012. Vol. 58. № 3. P. 406-4014. DOI:https://doi.org/10.1016/j.cyto.2012.03.011.
30. Beetz A., Messer G., Oppel T. et al. Induction of interleukin 6 by ionizing radiation in a human epithelial cell line: control by corticosteroids // Int. J. Radiat. Biol. 1997. Vol. 72. № 1. P. 33-43.
31. Morrissey P.J., Charrier K., Alpert A., L. Bressler L. In vivo administration of IL-1 induces thymic hypoplasia and increased levels of serum corticosterone. [in 3 h] // J. Immunol. 1988. Vol. 141. № 5. P. 1456-1463.
32. Петров Р.В. Роль гормонов и медиаторов в функционировании иммунной системы // Вест. АМН СССР. 1980. № 8. C. 3-9.
33. Bodey B. Neuroendocrine influence on thymic haematopoiesis via the reticulo-epithelial cellular network // Expert Opin. Bio1. Ther. 2002. Vol. 6. № 1. P. 57-72.
34. von Vietinghoff S., Ley K. Homeostatic regulation of blood neutrophil counts // J. Immunol. 2008. Vol. 181. № 8. P. 5183-5188.
35. Marković L. Interaction involving the thymus and the hypothalamus-pituitary axis, immunomodulation by hormones // Srp. Arh. Celok. Lek. 2004. Vol. 132. № 5-6. P. 187-193.
36. Bodey B. Thymic reticulo-epithelial cells: key cells of neuroendocrine regulation // Expert Opin. Bio1. Ther. 2007. Vol. 7. № 7. P. 939-949.
37. Безин Г.И., Мороз Б.Б. Факторы, контролирующие рециркуляцию стволовых клеток. Модификация действия эндогенных глюкокортикоидов на миграцию КОЕ у Т-дефицитных мышей // Радиобиология. 1983. Т. 23. № 3. С. 328-331.
38. Shao L., Luo Y., Zhou D. Hematopoietic stem cell injury induced by ionizing radiation // Antioxid. Redox Signal. 2014. Vol. 20. № 9. P. 1447-1462. DOI:https://doi.org/10.1089/ars.2013.5635.
39. Meng A., Wang Y., Brown S.A. et al. Ionizing radiation and busulfan inhibit murine bone marrow cell hematopoietic function via apoptosis-dependent and -independent mechanisms // Exp. Hematol. 2003. Vol. 31. № 12. P. 1348-1356.
40. Halestrap A.P. Calcium, mitochondria and reperfusion injury: a pore way to die // Biochem. Soc. Trans. 2006. Vol. 34. Pt. 2. P. 232-237.
41. Green D.R., Kroemer G. The pathophysiology of mitochondrial cell death // Science. 2004. Vol. 305. № 5684. P. 626-629.
42. Michels J., Johnson P.W., Packham G. Mcl-1 // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2005. Vol. 37. № 2. P. 267-271.
43. Germain M., Milburn J., Duronio V. MCL-1 inhibits BAX in the absence of MCL-1/BAX Interaction // J. Biol. Chem. 2008. Vol. 283. № 10. P. 384-392.
44. Giorgi C., Missiroli S., Patergnani S. et al. Mitochondria-associated membranes: composition, molecular mechanisms, and physiopathological implications // Antioxid. Red. Signaling. 2015. Vol. 22. № 12. P. 995-1019.
45. Shao L., Sun Y., Zhang Z. et al. Deletion of proapoptotic Puma selectively protects hematopoietic stem and progenitor cells against high-dose radiation // Blood. 2010. Vol. 115. № 23. 4707-4714.
46. Yu H., Shen H., Yuan Y. et al. Deletion of Puma protects hematopoietic stem cells and confers long-term survival in response to high-dose gamma-irradiation // Blood. 2010. Vol. 115. № 17. P. 3472-3480.
47. Friedlander R.M., Gagliardini V., Rotello R.J., Yuan J. Functional role of interleukin 1 beta [IL-1 beta] in IL-1 beta-converting enzyme-mediated apoptosis // J. Exp. Med. 1996. Vol. 184. № 2. P. 717-724.
48. Mulroy T., McMahon J.A., Burakoff S.J. et al. Wnt-1 and Wnt-4 regulate thymic cellularity // Eur. J. Immunol. 2002. Vol. 32. № 4. P. 967-971.
49. Fernandez A., Huggins I.J., Perna L. et al. The WNT receptor FZD7 is required for maintenance of the pluripotent state in human embryonic stem cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014. Vol. 111. № 4. P. 1409-1414.
50. Miyamoto K., Araki K.Y., Naka K. et al. Foxo3a is essential for maintenance of the hematopoietic stem cell pool // Cell Stem Cell. 2007. Vol. 1 № 1. P. 101-112.
51. Essers M.A., de Vries-Smits L.M., Barker N. et al. Functional interaction between beta-catenin and FOXO in oxidative stress signaling // Science. 2005. Vol. 308 № 5725. P. 1181-1184.
52. Lento W., Ito T., Zhao C. et al. Loss of β-catenin triggers oxidative stress and impairs hematopoietic regeneration // Genes Dev. 2014. Vol. 28 № 9. P. 995-1004. DOI:https://doi.org/10.1101/gad.231944.113.
53. Miller T.W., Soto-Pantoja D.R., Schwartz A.L. et al. CD47 receptor globally regulates metabolic pathways that control resistance to ionizing radiation // J. Biol. Chem. 2015. Vol. 290. № 41. P. 24858-24874. DOI:https://doi.org/10.1074/jbc.M115.665752.
54. Kozlov V.A. Intracellular factors regulating activity of hemopoietic stem cells // Bull. Exp. Biol. Med. 2005. Vol. 139. № 1. P. 106-113.
55. Steingen C., Brenig F., Baumgartner L. et al. Characterization of key mechanisms in transmigration and invasion of mesenchymal stem cells // J. Mol. Cell Cardiol. 2008. Vol. 44. № 6. P. 1072-1084. DOI:https://doi.org/10.1016/j.yjmcc.2008.03.010
56. Gao P., Tchernyshyov I., Chang T.C. et al. c-Myc suppression of miR-23a/b enhances mitochondrial glutaminase expression and glutamine metabolism // Nature. 2009. Vol. 458. № 7239. P. 762-765.
57. Gaugler M.H., Squiban C., Mouthon M.A. et al. Irradiation enhances the support of haemopoietic cell transmigration, proliferation and differentiation by endothelial cells // Brit. J. Haematol. 2001. Vol. 113. № 4. P. 940-950.
58. Nishida C., Kusubata K., Tashiro Y.et al. MT1-MMP plays a critical role in hematopoiesis by regulating HIF-mediated chemokine/cytokine gene transcription within niche cells // Blood. 2012. Vol. 119. № 23. P. 5405-5416. DOI:https://doi.org/10.1182/blood-2011-11-390849.
59. Till J.E., McCullouch E.A. A direct measurement of the radiation sensitivity of normal mouse bone marrow cells // Radiat. Res. Vol. 14. № 2. P. 213-222.
60. Ponte A.L., Ribeiro-Fleury T., Chabot V. et al. Granulocyte-colony-stimulating factor stimulation of marrow mesenchymal stromal cells promotes CD34+ Cell migration via a matrix metalloproteinase-2-dependent mechanism // Stem Cells Dev. 2012. Vol. 21. № 17. P. 3162-3172. DOI:https://doi.org/10.1089/scd.2012.0048
61. Porter S.N., Cluster A.S., Signer R.A.J. et al. Cell autonomously modulates the hematopoietic stem cell response to inflammatory cytokine // Stem Cell Reports. 2016. Vol. 6. № 6. P. 806-914.
62. Nowlan B., Futrega K., Brunck M.E. et al. HIF-1α stabilizing agent FG-4497 rescues human CD34+ cell mobilization in response to G-CSF in immuno-deficient mice // Exp. Hematol. 2017. Vol. 52. P. 50-55. DOI:https://doi.org/10.1016/j.exphem.2017.05.004.
63. Rafii S., Mohle R., Shapiro F. et al. Regulation of hematopoiesis by microvascular endothelium // Leuk. Lymphoma. 1997. Vol. 27. № 5-6. P. 375-386.
64. Heissig B., Ohki Y., Sato Y. et al. A role for niches in hematopoietic cell development // Hematology. 2005. Vol. 10. № 3. P. 247-253.
65. Wang X., Cheng Q., Li L. et al. Toll-like receptors 2 and 4 mediate the capacity of mesenchymal stromal cells to support the proliferation and differentiation of CD34⁺ cells // Exp. Cell Res. 2012. Vol. 318. № 3. P. 196-206. DOI:https://doi.org/10.1016/j.yexcr.2011.11.001.
66. Neta R., Vogel S.N., Oppenheim J.J., Douches S.D. Cytokines in radioprotection. Comparison of the radioprotective effects of IL-1 to IL-2, GM-CSF and IFN gamma. Lymphokine Res. 1986. Vol. 5. Suppl 1. P. 105-110.
67. Neta R., Oppenheim J.J., Douches S.D. Interdependence of the radioprotective effects of human recombinant interleukin 1 alpha, tumor necrosis factor alpha, granulocyte colony-stimulating factor, and murine recombinant granulocyte-macrophage colony-stimulating factor // J. Immunol. 1988. Vol. 140. № 1. P. 108-111.
68. Neta R., Oppenheim J.J. Cytokines in therapy of radiation injury // Blood. 1988. Vol. 72. № 3. P. 1093-1095.
69. Легеза В.И., Чигарева Н.Г., Абдуль Ю.А., Галеев И.Ш. Цитокины как средства ранней патогенетической терапии радиационных поражений. Их эффективность и механизм действия // Радиац. Биол. Радиоэкол. 2000. Т. 40. № 4. С. 420-424.
70. Рождественский Л.М., Коровкина Э.П., Дешевой Ю.Б. Применение рекомбинантного человеческого интерлейкина-1бета (беталейкин) для лечения острой лучевой болезни тяжелой степени у собак // Радиац. биол. Радиоэкол. 2008. Т. 48. № 2. С. 185-194.
71. Reimers J., Wogensen L.D., Welinder B. et al. The pharmacokinetics, distribution and degradation of human recombinant interleukin 1 beta in normal rats // Scand. J. Immunol. 1991. Vol. 34. № 5. P. 597-610.
72. Гребенюк А.Н., Аксенова Н.В., Зацепин В.В., Назаров В.Б., Власенко Т.Н. Влияние препарата Б-190 и интерлейкина-1бета на динамику количества клеток периферической крови и функциональный статус нейтрофилов облученных мышей // Радиац. биол. Радиоэкол. 2013. Т. 53. № 3. С. 290-295.
73. van Os R., Lamont C., Witsell A., Mauch P.M. Radioprotection of bone marrow stem cell subsets by interleukin-1 and kit-ligand: implications for CFU-S as the responsible target cell population // Exp. Hematol. 1997. Vol. 25. № 3. P. 205-210.
74. Легеза В.И., Чигарева Н.Г., Петкевич Н.В. и соавт. Экспериментальное изучение эффективности интерлейкина-1бета при радиационных поражениях // Гематол. Трансфузиол. 1995. Т. 40. № 3. 10-13.
75. Рождественский Л.М., Дешевой Ю.Б., Лебедев В.Г., Нестерова Т.А. Зависимость терапевтического эффективности интерлейкина-1β от времени применения препарата мышам после воздействия ионизирующего излучения // Радиац. биол. Радиоэкол. 2002. Т. 42. № 1. С. 65-69.
76. Linard C., Marquette C., Clarençon D. et al. Acute ileal inflammatory cytokine response induced by irradiation is modulated by subdiaphragmatic vagotomy // J. Neuroimmunol. 2005. Vol. 168. № 1-2. P. 83-95.
77. Bigildeev A.E., Zezina E.A., Drize N.J. The effects of interleukin-1 beta and gamma-quantum braking radiation on mesenchymal progenitor cells // Mol. Biol. 2017. Vol. 51. № 3. P. 393-403.
78. Hancock S.L., Chung R.T., Cox R.S., Kallman R.F. Interleukin 1 beta initially sensitizes and subsequently protects murine intestinal stem cells exposed to photon radiation // Cancer Res. 1991. Vol. 51. № 9. P. 2280-2285.
79. Ульянова Л.П., Кетлинский С.А. Будагов Р.С. Исследование эффективности интерлейкина-1бета при лечении комбинированных радиационно-термических поражениях // Радиац. биол. Радиоэкол. 1997. Т. 37. № 2. С. 175-181.
80. Fu Y., Wang Y., Du L. et al. Resveratrol inhibits ionising irradiation-induced inflammation in MSCs by activating SIRT1 and limiting NLRP-3 inflammasome activation // Int. J. Mol. Sci. 2013. Vol. 14. № 7. P. 14105-14118. DOI:https://doi.org/10.3390/ijms140714105.
81. Singh V.K., Grace M.B., Parekh V.I. et al. Effects of genistein administration on cytokine induction in whole-body gamma irradiated mice // Int. Immunopharmacol. 2009. Vol. 9. № 12. P. 1401-1410. DOI:https://doi.org/10.1016/j.intimp.2009.08.012.
82. Ha C.T., Li X.H., Fu D. et al. Genistein nanoparticles protect mouse hematopoietic system and prevent proinflammatory factors after gamma irradiation // Radiat. Res. 2013. Vol. 180. № 3. P. 316-325. DOI:https://doi.org/10.1667/RR3326.1.
83. Васин М.В., Ушаков И.Б., Ковтун В.Ю. и соавт. Влияние сочетанного применения кверцетина и индралина на процессы пострадиационного восстановления системы кроветворения при острой лучевой болезни // Радиац. биол. Радиоэкол. 2011. Т. 51. № 2. С. 247-251.
84. Fibbe W.E., van Damme J., Billiau A. et al. Interleukin 1 induces human marrow stromal cells in long-term culture to produce granulocyte colony-stimulating factor and macrophage colony-stimulating factor // Blood. 1988. Vol. 71. № 2. P. 430-435.
85. Лебедев В.Г., Мороз Б.Б., Дешевой Ю.В., Рождественский Л.М. Исследование механизма противолучевого действия интерлейкина-1β на длительной культуре костного мозга // Радиац. биол. Радиоэкол. 2002. Т. 42. № 1. С. 60-64.
86. Лебедев В.Г., Мороз Б.Б., Дешевой Ю.Б., Лырщикова А.В. Изучение роли гемопоэзиндуцирующего микроокружения в механизме радиозащитного действия интерлейкина-lß на модели длительных культур костного мозга // Радиац. биол. Радиоэкол. 2004. Т. 44. № 2. С. 170-175.
87. Hosoi Y., Kurishita A., Ono T., Sakamoto K. Effect of recombinant human granulocyte colony-stimulating factor on survival in lethally irradiated mice // Acta Oncol. 1992. Vol. 31. № 1. P. 59-63.
88. Рождественский Л.М., Щёголева Р.А., Дешевой Ю.Б. и соавт. Сравнительная оценка лечебной эффективности разных препаратов гранулоцитарного колониестимулирующего фактора в опытах на облученных мышах // Радиац. биол. Радиоэкол. 2012. Т. 52. № 5. С. 503-509.
89. Рождественский Л.М., Шлякова Т.Г., Щёголева Р.А. и соавт. Оценка лечебной эффективности отечественных препаратов Г-КСФ в опытах на облученных собаках // Радиац. биол. Радиоэкол. 2013. Т. 53. № 1. С. 47-54.
90. Farese A.M., Cohen M.V., Katz B.P. et al. Filgrastim improves survival in lethally irradiated nonhuman primates // Radiat. Res. 2013. Vol. 179. № 1. P. 89-100. DOI:https://doi.org/10.1667/RR3049.1.
91. Селидовкин Г.Д., Барабанова А.В. Лечение острой лучевой болезни от равномерного и неравномерного облучения // В кн.: Радиационная медицина. Под редакцией Л.А. Ильина. - М.: Изд. АТ. 2001. Т. 2. С. 108-129.
