СТИМУЛЯТОРЫ КОРНЕОБРАЗОВАНИЯ И ИХ ВЛИЯНИЕ НА УКОРЕНЕНИЕ ЗЕЛЕНЫХ И ОДРЕВЕСНЕВШИХ ЧЕРЕНКОВ КЛОНОВЫХ ПОДВОЕВ ГРУШИ
Аннотация и ключевые слова
Аннотация (русский):
влияния различных стимуляторов корнеобразования на процесс укоренения при размножении клоновых подвоев груши зелеными и одревесневшими черенками. Объект исследований – клоновые подвои груши ПГ 2, ПГ 12, ПГ 17-16. Укоренение черенков проводили в теплице с пленочным покрытием с установкой искусственного туманообразования. Субстрат – смесь песка с торфом (соотношение 1:1). Схема посадки черенков – 5×5 см, повторность – 4-кратная по 50 черенков в повторении, размещение вариантов рендомизированное. В качестве стимуляторов корнеобразования при зеленом черенковании применяли Корневин (опудривание срезов) и Рибав-экстра (0,01 %), одревесневшими черенками – Корневин (0,1 %) и Рибав-экстра (0,01 %), контроль – в обоих случаях вода (продолжительность экспозиции – 16 ч). Зимние условия в годы исследования клоновые подвои груши перенесли относительно благополучно, за исключением зимы 2019–2020 гг., когда общая степень подмерзания у подвоев ПГ 2 и ПГ 17-16 составила 1 балл, а у подвоя ПГ 12 – 5 баллов (выпад растений 90 %). Начало вегетации в 2018 г. отмечено 22…23 мая, в 2019 г. – 5…6 мая, в 2020 г. – 18…19 апреля. В 2018–2019 гг. зеленое черенкование проводили 20 июня, в 2020 г. – 10 июня. Более ранние сроки черенкования в 2020 г. объясняются быстрым отрастанием и одревеснением побегов (жаркая погода и недобор осадков в первые месяцы вегетации). В контроле массовое образование корней отмечали через 6 недель. Обработка черенков стимуляторами роста способствовала ускорению этого процесса, в результате чего массовое образования корней наблюдали через 4…5 недель. В среднем за годы исследований укореняемость при использовании Корневина, по сравнению с контролем, возросла на 13…18 %, Рибав-экстра – на 10…13 %. Для подвоя ПГ 12 характерна более высокая укореняемость зеленых черенков (51,5…56,5 %), чем для ПГ 2 (47,7…49 %) и ПГ 17-16 (41,7…44,3 %). Укореняемость при применении Корневина составила 50 %, Рибав-экстра – 47 %. ПГ 12 – единственный изучаемый подвой, у которого отмечали укоренение одревесневших черенков: в контроле 24 %, при использовании препаратов – 44,5…52,0 %

Ключевые слова:
стимуляторы корнеобразования, размножение, клоновые подвои, груша (Pyrus), зеленый черенок, одревесневший черенок, укореняемость
Текст
Текст (PDF): Читать Скачать

Плодовые и ягодные растения играют большую роль в питании человека. Из плодовых культур наибольшее значение имеют яблоня, груша, виноград, цитрусовые, в тропических странах – финиковая и кокосовая пальмы, бананы; из ягодных культур самой высокой популярностью пользуется земляника [1].

Ежегодный мировой сбор груши составляет 18…20 млн т плодов, или 2…3 кг на душу населения. Ее ведущие производители в мире – Китай и Аргентина. Вместе они формируют основу мирового рынка груши. В России производство плодов груши незначительно – 65…68 тыс. т, или 0,45 кг на человека в год. При этом более 90 % всех грушевых насаждений сосредоточено в южных регионах, в частности на Северном Кавказе. И только около 2…3 % в более северных регионах, преимущественно в любительском садоводстве [2].

Развитие современного плодоводства предполагает повышение продуктивности насаждений и снижение себестоимости производства продукции путем создания низкорослых уплотненных посадок интенсивного типа [3]. Один из элементов решения этой задачи – использование зимостойких клоновых подвоев карликовой силы роста, устойчивых к бактериальным, грибным и вирусным болезням, способных размножаться вегетативно отводками и обеспечивать формирование урожая высокого качества. Преимущество их использования доказано опытом таких стран, как Англия, Германия, Польша, Канада, США и др. [4, 5, 6].

Подвои очень продуктивно используют в интенсивном садоводстве, они играют важную роль в выращивании посадочного материала, обеспечивая одномерную силу роста, раннее вступление в плодоношение, легкость размножения, стабильные урожаи. Вегетативно размножаемые подвои плодовых культур уверенно вытесняют сильнорослые семенные подвои из производства [7, 8].

На базе ВНИИ садоводства имени И. В. Мичурина созданы клоновые подвои груши ПГ 2, ПГ 17-16, ПГ 12, которые характеризуются высокой укореняемостью при размножении зелеными черенками, зимостойкостью, устойчивостью к буроватости и септориозу, хорошей совместимостью с сортами [9, 10].

При этом в нашей стране остро ощущается нехватка качественного сертифицированного посадочного материала сортов отечественной селекции, и сельскохозяйственные товаропроизводители вынуждены обращаться к иностранным поставщикам [11]. Наиболее часто применяемые способы производства посадочного материала в современном питомниководстве в нашей стране – зеленое черенкование и 

размножение одревесневшими черенками. Их использование позволяет повысить эффективность размножения, сократить период выращивания саженцев и снизить себестоимость посадочного материала. Промышленное размножение культурных сортов зелеными черенками возможно при реализации комплекса таких мероприятий, как подбор сортов с высокой способностью к укоренению, применение регуляторов роста, создание оптимальных условий для укоренения [12, 13, 14].

Использование стимуляторов роста при вегетативном размножении способствует усовершенствованию технологии производства саженцев [15, 16, 17].

Цель исследований – изучить особенности влияния стимуляторов корнеобразования на укоренение клоновых подвоев груши зелеными и одревесневшими черенками.

Условия, материалы и методы. Работу проводили в 2018–2020 гг. в саду Омского аграрного научного центра, расположенном в южной лесостепи. Почва опытного участка – лугово-черноземная среднесуглинистого гранулометрического состава с выраженной песчаной фракцией, содержание гумуса (по Тюрину) – 3,4…3,5 %, общего азота (дисульфофеноловым методом) – 0,10…0,23 %, подвижного фосфора (по Чирикову) и калия (по Петербургскому) – соответственно 107…215 и 97…528 мг/кг. В почвенном поглощающем комплексе преобладает кальций, и содержится небольшое количество магния. Реакция почвенного раствора в пахотном слое близка к нейтральной [18].

Климатические условия на территории проведения исследований отличаются суровой холодной малоснежной зимой, теплым и даже жарким, но непродолжительным летом, короткой весной и осенью. Продолжительность безморозного периода в среднем составляет 110…120 дней. Ночные заморозки в воздухе прекращаются 21…22 мая и начинаются 10…22 сентября. Сумма среднесуточных температур за период с температурой выше 10 ºС составляет 1850…2050 ºС, продолжительность этого периода 120…130 дней. В среднем за год выпадает 300…350 мм осадков, большая их часть (от 200 до 250 мм) приходится на летний период [19, 20].

Зима 2017–2018 г. характеризовалась холодным температурным режимом. Пониженные температуры отмечали в третьей декаде января и первой декаде февраля, отрицательного влияния на перезимовку они не оказали, поскольку в декабре и январе выпало достаточное количество осадков. Гидротермический режим летних месяцев периода вегетации характеризует погоду 2018 г. как умеренно теплую и влажную. Количество осадков, выпавших за вегетационный период, составило 258 мм, или 109,3 % от нормы. Дефицит влаги ощущался в первой и второй декадах июня и июля. Условия зимнего периода 2018–2019 г. были благоприятными для перезимовки растений, характеризовались умеренно-холодным режимом. Осадков выпало больше нормы, распределялись они равномерно. Анализ гидротермического режима летних месяцев позволяет охарактеризовать период вегетации 2019 г., как теплый и влажный. Количество осадков, выпавших за вегетационный период, – 280,1 мм, или 118,6 % от нормы. Дефицит влаги ощущался в третьей декаде июня, второй и третьей декадах июля.

Условия зимнего периода 2019–2020 г. характеризовались умеренно-холодным режимом, исключение составил ноябрь с холодной погодой при отсутствии снежного покрова. Абсолютный минимум опускался до -26,9 ºС – 19 ноября. Погода летних месяцев 2020 г. была теплой и засушливой. Сумма осадков, выпавших за вегетационный период, составила 205 мм, или 87 % от нормы. Дефицит увлажнения ощущался в мае и июле.

Объектами исследования были клоновые подвои груши, полученные во ВНИИС им И. В. Мичурина: ПГ 2 – куст сильнорослый, прямостоячий, ветвление выражено достаточно сильно, при размножении зелеными черенками характеризуется образованием большого количества вторичных корней; ПГ 17-16 – куст среднерослый, прямостоячий, ветвление – слабое; ПГ 12 – куст среднерослый, раскидистый, более разветвленная, чем у семенных подвоев, корневая система.

Маточник клоновых подвоев груши высажен осенью 2009 г. по схеме 180 × 20 см. Заготовку одревесневших побегов проводили осенью, посадку черенков – в третьей декаде апреля. Зеленое черенкование в годы исследований осуществляли в первой – второй декадах июня, исходя из погодных условий. Субстрат – смесь песка с торфом (соотношение 1:1), схема посадки подвоев 5 × 5 см, в четырехкратной повторности (по 50 шт. в повторении), размещение вариантов рендомизированное. В качестве стимуляторов корнеобразования использовали Корневин и Рибав-экстра, при зеленом черенковании – Корневином опудривали срезы, в остальных случаях – их замачивали в водных растворах (продолжительность экспозиции – 16 ч), контроль – замачивание в обычной воде. Заготовку побегов, нарезку черенков, уход, наблюдения и учеты в опытах осуществляли согласно методике, разработанной в ТСХА [21]. Укоренение определяли в виде процентного отношения укоренившихся черенков к общему количеству высаженных. Высоту растений и длину корневой системы измеряли линейкой у всех укоренившихся черенков.

Укоренившиеся черенки до конца сезона образуют небольшие побеги, которые преждевременно окультуривать без доращивания, поэтому их высаживали на доращивание в поле по схеме 10 × 15 см.

После заготовки зеленых черенков в маточнике остаются побеги, которые осенью заготавливали в качестве одревесневших черенков. Их нарезали из нижней части побега, длиной по 10…12 см. Связанные в пучки черенки хранили в ящиках с опилками под снегом. Изучение биологических особенностей подвоев (биометрические параметры растений, зимостойкость) проводили по общепринятым методикам [22, 23]. Математическую обработку результатов исследований осуществляли согласно методике Б. А. Доспехова.

Анализ и обсуждение результатов исследований. Зимние условия в годы проведения исследований клоновые подвои груши перенесли относительно благополучно. Исключение составила зима 2019–2020 гг., когда общая степень подмерзания у подвоев ПГ 2 и ПГ 17-16 находилась на уровне 1 балла, у подвоя ПГ 12 – 5 баллов (выпад растений 90 %). Начало вегетации в 2018 г. отмечали 22…23 мая, в 2019 г. – 5…6 мая, в 2020 г. – 18…19 апреля. Наибольшей высотой характеризовались растения подвоя ПГ 2, который по силе роста относится к сильнорослым, к концу вегетации 2020 г. в маточном питомнике величина этого показателя достигла 238 см (табл. 1). Подвои ПГ 12 и ПГ 17-16 отнесены к среднерослым, их высота к концу периода вегетации в годы исследований варьировала соответственно в интервалах 94…95 см и 215…223 см.

В 2018–2019 гг. черенкование проводили 20 июня, в 2020 г. – 10 июня. Более ранние сроки черенкования в 2020 г. объясняются быстрым отрастанием и одревеснением побегов (жаркая погода и недобор осадков в первые месяцы вегетации). В 2018–2019 гг. образование каллюса у обработанных изучаемыми препаратами черенков при зеленом черенковании отмечали на 10-е сутки после посадки, при 22 сутках в контроле. В 2020 г. его наблюдали на 12 сутки. Массового загнивания черенков в годы исследований не зафикисровано, большинство неукоренившихся черенков были с каллюсом. В 2020 г. отмечали сильное подгорание листьев на черенках во всех вариантах, что обусловлено жаркой погодой в период укоренения. Массовое образование корней при использовании стимуляторов наблюдали через 4…5 недель после посадки, в контроле – на 8…10 дней позже. То есть обработка черенков стимуляторами роста способствовала ускорению образования корней.

По годам в контроле укореняемость клонового подвоя ПГ 2 варьировала от 30 до 38 %, ПГ 12 – от 36 до 40 %, ПГ 17-16 – от 28 до 34 % (табл. 2). В 2018 г. все используемые стимуляторы корнеобразования увеличили укореняемость черенков исследуемых подвоев, по сравнению с контролем, на 9…20 %, в 2019 г. – на 11…17 %. В 2020 г. использование препаратов повысило укореняемость черенков клонового подвоя ПГ 2 с 30 % в контроле до 46 % в обоих вариантах, у подвоя ПГ 17-16 – с 28 % до 39…42 %. Статистически значимых отличий во все годы между опытными вариантами не зафиксировали. Однако отмечали тенденцию к росту величины этого показателя в варианте с применением Корневина. Максимальное в опыте укоренение наблюдали в 2018–2019 гг. у клонового подвоя ПГ 12 при использовании Корневина – 56…57 %. В 2020 г. черенкование этого подвоя не проводили в связи с выпадом его в маточнике. В среднем за годы исследований наибольшую величину этого показателя отмечали у подвоя груши ПГ 12 – в зависимости от применяемого препарата 51,5…56,5 %, наименьшую у ПГ 17-16 – 41,7…44,3 %. Прирост надземной части был небольшим – 11,4 см. Высаженные осенью, после выкопки из теплицы, при проведении всех агротехнических мероприятий они достигали стандартных параметров на следующий год.

После доращивания зеленых черенков в поле лучшими биометрическими параметрами отличался подвой ПГ 2: высота растений составила 54,2 см, диаметр штамба – 1,1 см (табл. 3). У саженцев подвоя ПГ 12 они были наименьшими – 32,1 и 0,6 см соответственно. Длина корней в среднем за годы исследований у изучаемых подвоев варьировала от 7 до 11 см.

При размножении подвоев груши одревесневшим черенком укоренение наблюдали у подвоя ПГ 12. В среднем за годы исследований доля укорененных черенков при использовании регуляторов корнеобразования была выше контроля (24 %). При применении Корневина она составила 52 %, Рибав-экстра – 44,5 %. Прирост надземной части был небольшим и составил 4,5 см.

После доращивания одревесневших черенков в поле лучшими биометрическими показателями отличался подвой ПГ 2: высота растений составила 51,2 см, диаметр штамба – 0,8 см. У саженцев подвоя ПГ 12 они были наименьшими – 35,0 и 0,5 см соответственно, а у подвоя ПГ 17-16 занимали промежуточное положение – 42,4 и 0,6 см.

Выводы. Использование стимуляторов корнеобразования повысило укореняемость зеленых черенков у клоновых подвоев груши на 10…18 %. В среднем за годы исследований при применении Корневина она составила 50 %, Рибав-экстра – 47 %. Для подвоя груши ПГ 12 была характерна более высокая укореняемость зеленых черенков (51,5…56,5 %). ПГ 12 – единственный изучаемый подвой, у которого отмечена способность к укоренению одревесневших черенков: в контроле – 24 %, при использовании стимуляторов роста – 44,5…52 %.

 

Список литературы

1. Акимов М. Ю., Макаров В. Н., Жбанова Е. В. Роль плодов и ягод в обеспечении человека жизненно важными биологически активными веществами // Достижения науки и техники АПК. 2019. Т. 33. № 2. С. 56-60.

2. Сёмин И. В., Долматов Е. А., Ожерельева З. Е. Перспективы использования подвоя интенсивного типа для возделывания садов груши в условиях Центральной России // Овощи России. 2020. № 5. С. 75-80.

3. Клоновые подвои - основа повышения продуктивности насаждений плодовых культур / Н. Н. Драбудько, М. Ю. Ганусенко, Т. П. Грушева и др. // Плодоводство: сб. науч. трудов. Минск: РУП «Институт плодоводства», 2018. С. 247-257.

4. Будаговский В. И. Культура слаборослых плодовых деревьев. М.: Колос, 1976. 303 с. Грязев В. А. Клоновые подвои - основа интенсивного садоводства // Садоводство и виноградарство.1991. № 9, С. 25-27.

5. Самусь В. А. Агробиологические основы интенсификации производства плодов яблони в республике Беларусь: автореф. дис. ... канд. с.-х. наук. Горки, 2007. 47 с.

6. Кастрицкая М. С., Самусь В. А., Луговцов А. Н. Размножение перспективных клоновых подвоев груши // Плодоводство: сб. науч. трудов. Самохваловичи: Республиканское научно-производственное дочернее унитарное предприятие "Институт плодоводства", 2016. С. 98-104.

7. Савин Е. З., Мурсалимова Г. Р., Дегтярев Н. А. Клоновые подвои яблони и груши в производственных условиях Оренбуржья // Вестник Оренбургского государственного университета. 2008. № 12 (94). С. 20-22.

8. Исаев Р. Д., Сергеев Д. В. Использование новых клоновых подвоев груши в технологии выращивания посадочного материала // Плодоводство и ягодоводство России: сб. науч. работ. М.: ВСТИСП, 2012. Т. ХХХI. ч. 1. С. 220-228.

9. Исаев Р. Д., Сергеев Д. А. Характеристика перспективных клоновых подвоев груши ВНИИС им. И. В. Мичурина // Плодоводство и ягодоводство России. М.: ВСТИСП, 2009. Т. XXI. С. 124-128.

10. Драгавцева И. А., Драговцев В. А., Ефимова И. Л. Оценка взаимодействия генотипов привоя и подвоя яблони с использованием биометрических методов // Сельскохозяйственная биология. 2015. Т. 50. № 5, С. 590-599.

11. Никитин А. В. Основные направления реализации национального проекта «Наука» в Тамбовской области (на примере отрасли садоводства) // Достижения науки и техники АПК. 2019. Т. 33. № 2. С. 5-7.

12. Аксененко В. Ф., Абаев С. А. Перспективность клоновых подвоев для увеличения выхода саженцев яблони // Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2008. № 2. С. 39-40.

13. Мурсалимова Г. Р. Использование регуляторов роста растений при размножении подвоев плодовых культур // Современное садоводство. 2018. № 3. С. 147-153.

14. Журавлева А.В. Особенности размножения клоновых подвоев яблони зелеными черенками при использовании различных стимуляторов корнеобразования // Достижения науки и техники АПК. 2019. Т. 33. № 12. С. 65-67.

15. Maarri K., Haddad S., Fallouh I., et al. Al Selections of Pyrus syriaca as promising rootstocks for pear cultivars. VIII International Symposium on Canopy, Rootstocks and Environmental Physiology in Orchard Systems // Acta Hort. 732, 2007. 1. No 104. P. 217-220.

16. Lukatkin, A. S., Mokshin, E. V., da Silva J.A.T. Use of alternative plant growth regulators and carbon sources to manipulate Dianthus caryophyllus L. shoot induction in vitro // Rendiconti Lincei. 2017. Vol. 3. Р. 583-588.

17. Мищенко Л. Н. Почвы Омской области и их сельскохозяйственное использование. Омск: ОмСХИ, 1991. 164 с.

18. Климат Омска / под ред. Ц. А. Швер. Л.: Лениздат., 1980. 250 с.

19. Ковба С. А. Агроклиматический справочник по Омской области. Л.: Лениздат., 1959. 226 с.

20. Тарасенко М. Т. Зеленое черенкование садовых и лесных культур. М.: МСХА, 1991. 268 с.

21. Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур / под общ. ред. Е.Н. Седова и Т. П. Огольцовой. Орел: ВНИИСПК,1999. 608 с.

22. Гулько И. П. Методические рекомендации по комплексному изучению клоновых подвоев яблони. Киев: Изд. Украинского НИИ садоводства, 1981. 23 с.

Войти или Создать
* Забыли пароль?