Россия
Россия
сотрудник
Воронеж, Россия
УДК 630 Лесное хозяйство. Лесоводство
В последние десятилетия все большую популярность в мире приобретает органическое земледелие, в котором не используются искусственные химические удобрения и пестициды. С давних пор морские водоросли использовались в качестве стимулятора роста растений для получения высококачественной экологически чистой продукции. В то же время, их влияние на древесные культуры еще недостаточно изучено. В статье рассматривается влияние микроудобрений Seaweed Seychelles Liquid®™ на основе водорослей с Сейшельских островов на рост и развитие березы пушистой 15-1 (Betula pubescens Ehrh.), размноженной способом in vitro. В качестве объекта исследования использовали экспланты на стадии мультипликации и растения, переведенные для доращивания в условия закрытой корневой системы (ЗКС). В среду woody plant medium (WPM) для культивирования древесных растений, дополненную регуляторами роста 300 мкг/л бензиламино-пурина (БАП) и 200 мкг/л индолил-3-уксусной кислоты (ИУК) для подкормки вносили микроудобрения в концентрации 10, 15, 20, 25 % об. Рекомендованную производителем концентрацию 20% об. использовали при переводе в нестерильные условия. Растения культивировали в контролируемых условиях in vitro лаборатории и теплицы в течение двух недель и двух месяцев, соответственно, после чего фиксировали изменение морфометрических параметров. Полученные результаты свидетельствуют о стимулирующем воздействии органического удобрения при использовании концентраций 20 и 25 % об. на микроклоны березы пушистой (Betula pubescens Ehrh.) в условиях in vitro. Более значительная стимуляция наблюдалась в условиях ЗКС, где прирост опытных растений был выше контрольных на 22% по окончанию опыта. Результаты проведенных экспериментов позволяют рекомендовать органические удобрения из морских водорослей для стимуляции ростовых процессов у березы пушистой (Betula pubescens Ehrh.) при использовании концентраций не менее 20% об. при культивировании в условиях ЗКС.
морские водоросли, органические удобрения, древесные растения, береза пушистая, Betula pubescens, in vitro, клональное микроразмножение, закрытая корневая система, ростовые процессы
1. Ghareeb R. Y., Shams El-Din N. G. E. D., Maghraby D. M. E., Ibrahim D. S., Abdel-Megeed A., Abdelsalam N. R. Nematicidal activity of seaweed-synthesized silver nanoparticles and extracts against Meloidogyne incognita on tomato plants. Scientific reports. 2022;12(1):3841. https://doi.org/10.1038/s41598-022-06600-1.
2. Farghali M., Mohamed I. M. A., Osman A.I., Rooney D. W. Seaweed for climate mitigation, wastewater treatment, bioenergy, bioplastic, biochar, food, pharmaceuticals, and cosmetics: a review. Environ Chem Lett. 2023;21:97. https://doi.org/10.1007/s10311-022-01520-y.
3. Grammenou A., Petropoulos S. A., Thalassinos G., Rinklebe J., Shaheen S. M., Antoniadis V. Biostimulants in the Soil-Plant Interface: Agro-environmental Implications-A Review. Earth Syst Environ. 2023;7:583. https://doi.org/10.1007/s41748-023-00349-x.
4. Клочкова Т. А., Климова А. В., Клочкова Н. Г. Перспективы использования камчатских ламинариевых водорослей в региональном растениеводстве. Вестник Камчатского государственного технического университета. 2019;48: 90. Режим доступа: https://cyberleninka.ru/article/n/perspektivy-ispolzovaniya-kamchatskih-....
5. Ren C. G., Liu Z. Y., Wang X. L., Qin S. The seaweed holobiont: from microecology to biotechnological applications. Microbial Biotechnology. 2022;15(3):738. DOI: https://doi.org/10.1111/1751-7915.14014.
6. Yalçın S., Şükran Okudan E., Karakaş Ö., Önem A. N., Sözgen Başkan K. Identification and quantification of some phytohormones in seaweeds using UPLC-MS/MS. Journal of Liquid Chromatography & Related Technologies. 2019;42(15-16):475. DOI: https://doi.org/10.1080/10826076.2019.1625374.
7. Agarwal P. K., Dangariya M., Agarwal P. Seaweed extracts: Potential biodegradable, environmentally friendly resources for regulating plant defence. Algal Research. 2021;58:102363. DOI: https://doi.org/10.1016/j.algal.2021.102363.
8. Parab A., Shankhadarwar S. Growth enhancement of agricultural crops using seaweed liquid fertilizer. Plant Science Today. 2022;9(2):322. DOI: https://doi.org/10.14719/pst.1439.
9. Esserti S., Faize M., Rifai L. A., Smaili A., Belfaiza M., Faize L., Alburquerque N., Burgos L., Koussa T., Makroum K. Media derived from brown seaweeds Cystoseira myriophylloides and Fucus spiralis for in vitro plant tissue culture. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC). 2017;128: 437. DOI: https://doi.org/10.1007/s11240-016-1121-3.
10. Sumangala K., Srikrishnah S., Sutharsan S. Roses Growth and Flowering Responding to Concentration and Frequency of Seaweed (Sargassum crassifolium L.) Liquid Extract Application. Current agriculture research journal. 2019;7(2): 236. DOI: http://dx.doi.org/10.12944/CARJ.7.2.11.
11. Pascual P. R. L., Carabio D. E., Abello N. F. H., Remedios E. A., Pascual V. U. Enhanced assimilation rate due to seaweed biostimulant improves growth and yield of rice bean (Vigna umbellata). Agronomy research. 2021;19(4):1863. DOI: https://doi.org/10.15159/AR.21.106.
12. Dookie M., Ali O., Ramsubhag A., Jayaraman J. Flowering gene regulation in tomato plants treated with brown seaweed extracts. Scientia Horticulturae. 2021;276:109715. DOI: https://doi.org/10.1016/j.scienta.2020.109715.
13. Loconsole D, Cristiano G, De Lucia B. Improving Aerial and Root Quality Traits of Two Landscaping Shrubs Stem Cuttings by Applying a Commercial Brown Seaweed Extract. Horticulturae. 2022;8(9):806. DOI: https://doi.org/10.3390/horticulturae8090806.
14. Ali O., Ramsubhag A., Jayaraman J. Biostimulant Properties of Seaweed Extracts in Plants: Implications towards Sustainable Crop Production. Plants. 2021;10(3):531. DOI: https://doi.org/10.3390/plants10030531.
15. Mukherjee A., Patel J.S. Seaweed extract: biostimulator of plant defense and plant productivity. Int. J. Environ. Sci. Technol. 2020;17:553. DOI: https://doi.org/10.1007/s13762-019-02442-z.
16. Vicente TFL, Félix C, Félix R, Valentão P, Lemos MFL. Seaweed as a Natural Source against Phytopathogenic Bacteria. Marine Drugs. 2023; 21(1):23. https://doi.org/10.3390/md21010023.
17. Deolu-Ajayi A. O., Van der Meer I. M., Van der Werf A., Karlova R. The power of seaweeds as plant biostimulants to boost crop production under abiotic stress. Plant, Cell & Environment. 2022;45(9):2537. DOI: https://doi.org/10.1111/pce.14391.
18. Do Rosário Rosa V., Dos Santos A. L. F., da Silva A. A., Sab M. P. V., Germino G. H., Cardoso F. B., de Almeida Silva M. Increased soybean tolerance to water deficiency through biostimulant based on fulvic acids and Ascophyllum nodosum (L.) seaweed extract. Plant Physiology and Biochemistry. 2021;158:228. DOI: https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2020.11.008.
19. Grodetskaya TA, Evlakov PM, Fedorova OA, Mikhin VI, Zakharova OV, Kolesnikov EA, Evtushenko NA, Gusev AA. Influence of Copper Oxide Nanoparticles on Gene Expression of Birch Clones In Vitro under Stress Caused by Phytopathogens. Nanomaterials. 2022;12(5):864. https://doi.org/10.3390/nano12050864.
20. Теппер Е.З., Шильникова В.К., Переверзева Г.И. Практикум по микробиологии. М.: Дрофа, 2014, 255 с. Режим доступа: https://djvu.online/file/MLDLeplmwueOH.
