На нашем сайте используются cookie-файлы. Продолжая пользоваться данным сайтом, вы подтверждаете свое согласие на использование файлов cookie в соответствии с настоящим уведомлением и Пользовательским соглашением.
Отправить рукопись
Техника и технология пищевых производств
Журналы / Техника и технология пищевых производств / Том 56 Номер 1 / Комплексная характеристика штаммов Lactobacillus как перспективных компонентов пробиотических консорциумов
УДК 66

КОМПЛЕКСНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ШТАММОВ LACTOBACILLUS КАК ПЕРСПЕКТИВНЫХ КОМПОНЕНТОВ ПРОБИОТИЧЕСКИХ КОНСОРЦИУМОВ Комплексная характеристика штаммов Lactobacillus как перспективных компонентов пробиотических консорциумов

Опубликовано в Техника и технология пищевых производств · Том 56, Номер 1 · Страницы 164–179 · Рубрика: ОРИГИНАЛЬНАЯ СТАТЬЯ
DOI: https://doi.org/10.21603/2074-9414-2026-1-2630 · EDN: LDULAF
Получено: 15.12.2025 Одобрено: 03.03.2026 Опубликовано: 31.03.2026 Язык публикаций: RUS
Авторы
ФР
Фролова Анна Сергеевна
ORCID SPIN
МИ
Милентьева Ирина Сергеевна
ORCID SPIN
КО
Колпакова Дарья Евгеньевна
ORCID SPIN
НЕ
Неверова Ольга Александровна
ORCID SPIN
и др.
ЮС
Юстратов Владимир Петрович
ORCID SPIN
ПЕ
Петров Андрей Николаевич
ORCID SPIN
АННОТАЦИЯ
Пробиотики – живые микроорганизмы, положительно влияющие на здоровье человека. Наибольшее распространение среди пробиотических культур получили Lactobacillus, научный интерес к которым связан с возможностью их участия в профилактике метаболических заболеваний. Цель исследования – оценка потенциала ряда штаммов Lactobacillus для дальнейшего использования в качестве пробиотиков, компонентов биологически активных добавок и функциональных продуктов питания, направленных на профилактику метаболических заболеваний. Объекты исследования – штаммы Lactobacillus plantarum (B-5772, B-11264, B-3242), Lactobacillus fermentum (B-7574, B-7573), Lactobacillus acidophilus (B-194, B-2585, B-2900), Lactobacillus casei (B-7951). Для оценки устойчивости штаммов к антибиотикам использовали диско-диффузионный метод, для антагонистической активности – метод диффузии в агаре. Определяли источник углеводов в составе питательной среды для максимального накопления биомассы в единицах оптической плотности. С помощью хроматографического анализа оценивали качественный и количественный состав метаболитов – витаминов группы B, органических кислот и аминокислот. Биосовместимость штаммов определяли путем их совместного культивирования. Установлено, что штаммы B-194 и B-7951 устойчивы к действию стрептомицина. Промежуточную устойчивость проявляли B-7951 к азитромицину; B-7573 и B-7951 – к гентамицину; B-3242 и B-7573 – к стрептомицину. Высокую антагонистическую активность (более 23 мм) к Pseudomonas aeruginosa проявили B-11264 и B-7573; к Bacillus cereus – B-7573; к Enterococcus faecalis – B-11264, B-3242, B-7951; к Klebsiella pneumoniae – B-11264, B-3242 и B-7573. Выявлено, что штаммы лучше накапливали биомассу в присутствии лактулозы. Хроматографический анализ показал, что B-3242 продуцировал витамин В1 (25,98 ± 0,33 мг/г); B-7573 – витамин В3 (5,60 ± 0,03 мг/г); B-7573 – лимонную кислоту (52,6 ± 0,7 мг/л); B-2585 – лимонную (58,0 ± 0,8 мг/л) и янтарную (326,5 ± 3,2 мг/л) кислоты; B-7951 – щавелевую (17,1 ± 0,2 мг/л) и винную (17,1 ± 0,2 мг/л) кислоты. Обнаружено, что штамм B-11264 продуцировал триптофан (16,2 ± 0,2 мг/г), глутаминовую кислоту (15,1 ± 0,2 мг/г), глицин (19,1 ± 0,2 мг/г) и пролин (21,8 ± 0,3 мг/г). При совместном культивировании исследуемые штаммы продемонстрировали биосовместимость. Полученные данные подтвердили перспективность отдельных штаммов Lactobacillus для разработки пробиотических композиций и функциональных пищевых продуктов.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА
Lactobacillus, пробиотики, антагонистическая активность, антибиотики, метаболиты, биосовместимость штаммов
Финансирование
Работа выполнена в рамках государственного задания по теме «Разработка биологически активных добавок, состоящих из метаболитов растительных объектов in vitro, для защиты населения от преждевременного старения» (проект FZSR-2024-0008) с использованием оборудования ЦКП «Инструментальные методы анализа в области прикладной биотехнологии» на базе КемГУ.
Текст Список литературы
Текст
Текст (PDF)
Читать Скачать

1. Mu Q, Tavella VJ, Luo XM. Role of Lactobacillus reuteri in human health and diseases. Front. Microbiol. 2018;9:757. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.00757

2. Хозиев А. М., Евдокимов И. А., Цугкиев Б. Г., Гогаев О. К., Кабисов Р. Г. и др. Применение штаммов лактобактерий с заданными технологическими свойствами в биотехнологии кислосливочного масла. Техника и технология пищевых производств. 2025. Т. 55. № 3. С. 552–557. https://doi.org/10.21603/2074-9414-2025-3-2594

3. Zimina MI, Sukhin SA, Babich OO, Noskova SYu, Abrashina AA, et al. Investigating antibiotic activity of the genus Bacillus strains and properties of their bacteriocins in order to develop next-generation pharmaceuticals. Food and Raw Materials. 2016;4(2):92–100. http://doi.org/10.21179/2308-4057-2016-2-92-100

4. Markowiak P, Slizewska K. Effects of probiotics, prebiotics, and synbiotics on human health. Nutrients. 2017;9(9):21. https://doi.org/10.3390/nu9091021

5. Li H-Y, Zhou D-D, Gan R-Y, Huang S-Y, Zhao C-N, et al. Effects and mechanisms of probiotics, prebiotics, synbiotics, and postbiotics on metabolic diseases targeting gut microbiota: A narrative review. Nutrients. 2021;13(9):3211. https://doi.org/10.3390/nu13093211

6. Vesnina AD, Frolova AS, Chekushkina DYu, Milentyeva IS, Luzyanin SL, et al. Gut microbiota and its role in development of chronic disease and aging. Foods and Raw Materials. 2026;14(1):174–197. https://doi.org/10.21603/2308-4057-2026-1-668

7. Кишилова С. А., Леонова В. А., Митрова В. А., Рожкова И. В. Современные биотехнологические решения в области использования молочнокислых бактерий для молочной промышленности: от селекции штаммов до пробиотических продуктов. Техника и технология пищевых производств. 2025. Т. 55. № 3. С. 624–633. https://doi.org/10.21603/2074-9414-2025-3-2596

8. Vougiouklaki D, Tsironi T, Tsantes AG, Tsakali E, Van Impe JFM, et al. Probiotic properties and antioxidant activity in vitro of lactic acid bacteria. Microorganisms. 2023;11(5):1264. https://doi.org/10.3390/microorganisms11051264

9. Shah AB, Baiseitova A, Zahoor M, Ahmad I, Ikram M, et al. Probiotic significance of Lactobacillus strains: A comprehensive review on health impacts, research gaps, and future prospects. Gut Microbes. 2024;16(1):2431643. https://doi.org/10.1080/19490976.2024.2431643

10. Харитонов Д. В., Харитонова И. В., Просеков А. Ю. Разработка концепции создания синбиотиков и синбиотических молочных продуктов. Техника и технология пищевых производств. 2013. № 4. С. 91–94. https://elibrary.ru/RNIEON

11. Веснина А. Д., Фотина Н. В., Просеков А. Ю., Козлова О. В., Дышлюк Л. С. Получение пробиотического консорциума на основе выделенных из коровьего молока штаммов. Молочнохозяйственный вестник. 2021. № 2. С. 107–121. https://doi.org/10.52231/2225-4269_2021_2_107

12. Веснина А. Д., Просеков А. Ю., Козлова О. В., Курбанова М. Г., Козленко Е. А. и др. Разработка пробиотического консорциума для людей с онкологическими заболеваниями. Вестник ВГУИТ. 2021. Т. 83. № 1. С. 219–232. https://doi.org/10.20914/2310-1202-2021-1-219-232

13. Pereira GVM, Coelho BO, Júnior AIM, Thomaz-Soccol V, Soccol CR. How to select a probiotic? A review and update of methods and criteria. Biotechnology Advances. 2018;36(8):2060–2076. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2018.09.003

14. Sharifi-Rad J, Rodrigues CF, Stojanović-Radić Z, Dimitrijević M, Aleksić A, et al. Probiotics: Versatile bioactive components in promoting human health. Medicina (Kaunas). 2020;56(9):433. https://doi.org/10.3390/medicina56090433

15. Namiti VB, Nyerere AK, Kiiru JN. Stimulatory effects of simple sugars, honey, and selected defined minerals on growth vigor and production of inhibitory effects against selected Pathogens by a probiotic Lactobacillus acidophilus strain: An in vitro study. International Journal of Novel Research in Life Sciences. 2024;11(3):1–11. https://doi.org/10.5281/zenodo.11108950

16. Dimov I, Mollova D, Vasileva T, Bivolarski V, Nikolova M, et al. Metabolic profiling of probiotic strain Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus L14 cultivated in presence of prebiotic oligosaccharides and polysaccharides in simulating in vitro gastrointestinal tract system. Biotechnology & Biotechnological Equipment. 2023;37(1):260–272. https://doi.org/10.1080/13102818.2023.2178825

17. Dong Y, Han M, Fei T, Liu H, Gai Z. Utilization of diverse oligosaccharides for growth by Bifidobacterium and Lactobacillus species and their in vitro co-cultivation characteristics. Int Microbiol. 2024;27:941–952. https://doi.org/10.1007/s10123-023-00446-x

18. Froböse NJ, Bjedov S, Schuler F, Kahl BC, Kampmeier S, et al. Gram staining: a comparison of two automated systems and manual staining. J Clin Microbiol. 2020;58(12):e01914-20. https://doi.org/10.1128/JCM.01914-20

19. Шевченко И. А. Радиотелеметрическое исследование температуры в желудочно-кишечном тракте. Казанский медицинский журнал. 1968. Т. 49. № 3. С. 14–17.

20. Гурьева В. И., Бачинская В. М., Шарапова Н. Р. Определение чувствительности пробиотических штаммов бактерий к антибактериальным препаратам диско-диффузионным методом. Вестник Марийского государственного университета. Серия «Сельскохозяйственные науки. Экономические науки». 2024. Т. 10. № 1. С. 9–16. https://doi.org/10.30914/2411-9687-2024-10-1-9-16

21. Davoodabadi A, Dallal MM, Foroushani AR, Douraghi M, Yazdi MKS, et al. Antibacterial activity of Lactobacillus spp. isolated from the feces of healthy infants against enteropathogenic bacteria. Anaerobe. 2015;34:53–58. https://doi.org/10.1016/j.anaerobe.2015.04.014

22. Pazhoohan M, Sadeghi F, Moghadami M. Antimicrobial and antiadhesive effects of Lactobacillus isolates of healthy human gut origin on Enterotoxigenic Escherichia coli (ETEC) and Enteroaggregative Escherichia coli (EAEC). Microbial Pathogenesis. 2020;148:104271. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2020.104271

23. Jomehzadeh N, Javaherizadeh H, Amin M, Saki M, Al-Ouqaili MTS, et al. Isolation and identification of potential probiotic Lactobacillus species from feces of infants in southwest Iran. International Journal of Infectious Diseases. 2020;96:524–530. https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.05.034

24. Serazetdinova YuR, Chekushkina DYu, Borodina EE, Kolpakova DE, Minina VI, et al. Synergistic interaction between Azotobacter and Pseudomonas bacteria in a growth-stimulating consortium. Foods and Raw Materials. 2025;13(2):376–393. http://doi.org/10.21603/2308-4057-2025-2-651

25. Frolova AS, Fokina AD, Milentyeva IS, Asyakina LK, Proskuryakova LA, et al. The biological active substances of Taraxacum officinale and Arctium lappa from the Siberian Federal District. International Journal of Molecular Sciences. 2024;25(6):3263. https://doi.org/10.3390/ijms25063263

26. Belashova OV, Kozlova OV, Velichkovich NS, Fokina AD, Yustratov VP, et al. A phytochemical study of the clover growing in Kuzbass. Foods and Raw Materials. 2024;12(1):194–206. https://doi.org/10.21603/2308-4057-2024-1-599

27. Фролова А. С., Чекушкина Д. Ю., Лосева А. И., Неверова О. А., Заушинцена А. В. и др. Потенциал молочнокислых бактерий-пробиотиков с перспективой их использования в сыроделии. Сыроделие и маслоделие. 2025. № 4. С. 70–76. https://doi.org/10.21603/2073-4018-2025-4-35

28. Darbandi N, Komijani M, Abdoli A. Azithromycin therapy changed the intestinal microbiota, caused oxidative stress, and decreased memory function in adult wistar rats. Journal of Sciences, Islamic Republic of Iran. 2024;35(1):5–14. https://doi.org/10.22059/jsciences.2024.374944.1007858

29. Li T, Teng D, Mao R, Hao Y, Wang X, et al. A critical review of antibiotic resistance in probiotic bacteria. Food Research International. 2020;136:109571. https://doi.org/10.1016/j.foodres.2020.109571

30. Dang HT, Dinh HS, Loc TA, Nguyen LA. Antibiotic resistance characteristics of potential probiotic Lactobacillus strains. Vietnam Journal of Science and Technology. 2023;61(6):975–983. https://doi.org/10.15625/2525-2518/17261

31. Sukarya IBJ, Pratiwi IDPK, Hapsari NMIA, Puspawati NN. Antibiotic resistance of indigenous lactic acid bacteria isolates of kombucha and dadih. Jurnal Ilmu dan Teknologi Pangan. 2021;10(4):734–745.

32. Ma Q, Pei Z, Fang Z, Wang H, Zhu J, et al. Evaluation of tetracycline resistance and determination of the tentative microbiological cutoff values in lactic acid bacterial species. Microorganisms, 2021;9(10):2128. https://doi.org/10.3390/microorganisms9102128

33. Soltani N, Abbasi S, Baghaeifar S, Taheri E, Jadid MFS, et al. Antibacterial and antibiofilm activity of Lactobacillus strains secretome and extraction against Escherichia coli isolated from urinary tract infection. Biotechnology Reports. 2022;36:e00760. https://doi.org/10.1016/j.btre.2022.e00760

34. Tigu F, Assefa F, Mehari T, Ashenafi M. Probiotic property of lactic acid bacteria from traditional fermented condiments: Datta and awaze. International Food Research Journal. 2016;23(2):770. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.33845.35041

35. Li J, Chen X, Xie Z, Liang L, Li A, et al. Screening and metabolomic analysis of lactic acid bacteria-antagonizing Pseudomonas aeruginosa. Foods. 2023;12(14):2799. https://doi.org/10.3390/foods12142799

36. Sanam MUE, Detha AIR, Rohi NK. Detection of antibacterial activity of lactic acid bacteria, isolated from Sumba mare’s milk, against Bacillus cereus, Staphylococcus aureus, and Escherichia coli. Journal of Advanced Veterinary and Animal Research. 2022;9(1):53–58. https://doi.org/10.5455/javar.2022.i568

37. Ravi S, Ananthan HB, Reddy BN, Sankar S, Natarajan SN, et al. Evaluation of antibacterial efficacy of two commercially available probiotics as intracanal medicament against Enterococcus faecalis: An in vitro study. J Contemp Dent Pract. 2023;24:157–161. https://doi.org/10.5005/jp-journals-10024-3466

38. Fateh M, Forohi F, Rafiee F. The antimicrobial effect of Lactobacillus casei against Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli isolated from urinary samples. Journal of Advanced Biomedical Sciences. 2024;14(2):94–103. http://dx.doi.org/10.18502/jabs.v14i2.15755

39. Kim J-Y, Choi E-J, Lee J-H, Yoo M-S, Heo K, et al. Probiotic potential of a novel vitamin B2-overproducing Lactobacillus plantarum strain, HY7715, isolated from kimchi. Applied Sciences. 2021;11(13):5765. https://doi.org/10.3390/app11135765

40. Kim S-H, Singh D, Son SYo, Lee S, Suh D H, et al. Characterization and temporal dynamics of the intra- and extracellular environments of Lactiplantibacillus plantarum using multi-platform metabolomics. LWT. 2023;175:114376. https://doi.org/10.1016/j.lwt.2022.114376

41. Laakso K, Koskenniemi K, Koponen J, Kankainen M, Surakka A, et al. Growth phase‐associated changes in the proteome and transcriptome of Lactobacillus rhamnosus GG in industrial‐type whey medium. Microbial Biotechnology. 2011;4(6):746–766. https://doi.org/10.1111/j.1751-7915.2011.00275.x

42. Khromova NY, Epishkina JM, Karetkin BA, Khabibulina NV, Beloded AV, et al. The combination of in vitro assessment of stress tolerance ability, autoaggregation, and vitamin B-producing ability for new probiotic strain introduction. Microorganisms. 2022;10(2):470. https://doi.org/10.3390/microorganisms10020470

43. Szczerbiec D, Piechocka J, Glowacki R, Torzewska A. Organic acids secreted by Lactobacillus spp. isolated from urine and their antimicrobial activity against uropathogenic Proteus mirabilis. Molecules. 2022;27(17):5557. https://doi.org/10.3390/molecules27175557

44. Wang J, Tang X, Qu C, Zhang Y, Zhang C, et al. Development of an LC-MS method for the quantitative determination of six organic acids produced by bacterial fermentation in vitro and in vivo. Processes. 2025;13(3):697. https://doi.org/10.3390/pr13030697

45. Liu E, Hao P, Konno T, Yu Y, Oda M, et al. Amino acid biosynthesis and proteolysis in Lactobacillus bulgaricus Revisited: A Genomic Comparison. Computation Molecular Bioscience. 2012;2(3):61–77. http://dx.doi.org/10.4236/cmb.2012.23006

46. Ulmer A, Erdemann F, Mueller S, Loesch M, Wildt S, et al. Differential amino acid uptake and depletion in mono-cultures and co-cultures of Streptococcus thermophilus and Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus in a novel semi-synthetic medium. microorganisms. 2022;10(9):1771. https://doi.org/10.3390/microorganisms10091771

47. Wu Yu., Zhang Q., Ren Yi., Ruan Z. Effect of probiotic Lactobacillus on lipid profile: A systematic review and meta-analysis of randomized, controlled trials. PLoS One. 2017;12(6):e0178868. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0178868

48. Qiu X, Wu Q, Li W, Tang K, Zhang J. Effects of Lactobacillus supplementation on glycemic and lipid indices in overweight or obese adults: A systematic review and meta-analysis. Clinical Nutrition. 2022;41(8):1787–1797. https://doi.org/10.1016/j.clnu.2022.06.030

49. Bermúdez-Humarán LG, Chassaing B, Langella P. Exploring the interaction and impact of probiotic and commensal bacteria on vitamins, minerals and short chain fatty acids metabolism. Microbial Cell Factories. 2024;23:172. https://doi.org/10.1186/s12934-024-02449-3

Контент доступен под лицензией Creative Commons «С указанием авторства версии 4.0 Международная»
PDF Текст JATS XML
Контактные лица
Просеков Александр Юрьевич
Главный редактор
Просеков Александр Юрьевич
1431
загрузка
РИНЦ РИНЦ Science Index Crossref
CC
Контент доступен под лицензией Creative Commons «С указанием авторства версии 4.0 Международная» Creative Commons
© zh-szf.ru
Соглашение Политика защиты и обработки персональных данных Поддержка Powered by Editorum, 2026 Инструкции
Войти или Создать
* Забыли пароль?